Met behulp van Atomic Force Microscopy om elastische eigenschappen van biologische monsters bepalen door JPK Instruments

:: AZoNanotechnology Artikel

Besproken onderwerpen

Introductie
De Hertz Model
Problemen die moeten worden beschouwd
Voorbeeld Properties
Fit Range
Selectie van de Probe
Voorbeeld van een Inspringen Experiment
Voorbereiding van de Probe
Het uitvoeren van Inspringen Experimenten
Data Processing
Het systeem testen
Conclusie

Introductie

Met behulp van de atomic force microscoop (AFM) voor nanoindentation heeft ontpopt als een nuttig instrument zijn om elastische eigenschappen, zoals de elasticiteitsmodulus voor biologische monsters (figuur 1) te bepalen. Uitkragingen dienen als zachte nanoindenters waardoor lokaal testen van kleine en inhomogene monsters, zoals cellen of weefsels. Voor het berekenen van de parameter van belang de verschillende modellen worden gebruikt, maar de meeste van hen zijn gebaseerd op het Hertz model en uitgebreid tot de experimentele omstandigheden met betrekking tot de indringlichamen 'vorm of de dikte van het monster wedstrijd.

Figuur 1. Overzicht van de Young's modulus voor verschillende biologische materialen

Nanomechanical analyse van cellen wordt steeds belangrijker in verschillende gebieden, zoals kanker en ontwikkelingsbiologie. Verschillen in stijfheid van normale en kwaadaardige cellen werden gevonden en ook de verandering in metastatisch potentieel met een dalende cellulaire stijfheid kunnen worden gemarkeerd. Het bepalen van de cel cortex spanning van zebravis kiemlaag voorouders geopenbaard verschillen in stijfheid van de ecto-, meso-en endodermale progenitorcellen. Een ander voorbeeld uit het gebied van de ontwikkelingsbiologie is het mechanische testen van de groei substraten. Deze toepassing blijkt de belangrijke rol van matrix elasticiteit voor cellijn specificatie. Niet alleen de cellen, maar ook componenten van hun extracellulaire omgeving, hebben net als collageen fibrillen zijn getest op hun mechanische eigenschappen [17]. Het potentieel van deze methodiek wordt veel gebruikt in biologische en ook andere disciplines om elastische eigenschappen van verschillende matrices en materialen te beschrijven.

Dit rapport beschrijft de toepassing en de overname van elasticiteit experimenten met AFM techniek. Een overzicht van de meest gebruikte model, is de Hertz model en de aannames en de daaruit voortvloeiende beperkingen voor het gebruik met biologische monsters wordt in detail besproken.

De Hertz Model

De Hertz model benadert de steekproef als een isotroop en lineair elastisch stevige bezetten een oneindig uitbreiden half ruimte. Verder wordt verondersteld dat de indenter niet vervormbaar is en dat er geen extra interacties tussen indenter en monster. Indien aan deze voorwaarden is voldaan de Young's modulus (E) van het monster kan worden gemonteerd of worden berekend met behulp van de Hertz model. Verschillende parameters beschrijving van de eigenschappen van het monster en inspringing sonde moeten worden gespecificeerd.

Figuur 2. Top - Schets van de inspringing experiment. De cantilever is verplaatst naar het monster door een afstand z (hoogte (gemeten)). De cantilever is buigen in de tegengestelde richting (x), terwijl het monster wordt ingesprongen door een. Eindelijk een wordt berekend door de cantilever doorbuiging van de hoogte (gemeten). Bottom - Schematische voorstelling van de correctie van de hoogte voor de cantilever buigen (x) af te leiden van de tip-sample-scheiding (kracht inspringen curve).

De gegevens verkregen door inspringen metingen (kracht spectroscopie mode) zijn meestal percelen van geweld tegen piëzo-verplaatsing, in plaats van tip sample scheiding. Voor de toepassing van de Hertz-model, de bochten moeten worden omgezet zoals uitgelegd in figuur 2.

De Hertz model gaat uit van de inspringen te verwaarlozen in vergelijking met de steekproef dikte, dus inspringen diepte moet worden geoptimaliseerd. Het Hertz model is geldig voor kleine inkepingen (laten we zeggen tot 5-10% van de hoogte van de cel, misschien wel 200 tot 500 nm) waar het substraat heeft geen invloed op de berekeningen. Er kunnen extra beperkingen worden in inspringen diepgaand als de tip shape-model is een benadering. Vaak wordt de parabolische model wordt gebruikt als de indringlichaam is een bol omdat het gemakkelijker is geschikt om en de onderlinge aanpassing is redelijk voor kleine inkepingen. De JPK IP-software biedt automatische montage voor alle indenter vormen hier afgebeeld, dus er is niet meer nodig om deze benadering te maken.

Problemen die moeten worden beschouwd

De Hertz model maakt een aantal aannames, die niet echt voldaan als cellen of andere biologische monsters worden onderzocht.

In deze sectie deze afwijkingen worden besproken en hoe u de meest betrouwbare metingen te doen.

Voorbeeld Properties

De Hertz model gaat absoluut elastisch gedrag en homogeniteit van het monster. Maar de meeste biologische materialen zijn niet homogeen, noch absoluut elastisch. De energie geleverd door de indenter is niet helemaal terug gegeven door een cel (als hij zou worden gedaan door een absolute elastisch materiaal), maar verdwijnt als gevolg van viskeuze en plastisch gedrag, die ook verschijnt als hysterese tussen de mate en het intrekken van de kracht curve (afb. 3). De variabiliteit van de viskeuze gedrag zichtbaar als verschillende inspringing snelheden worden getest. Hoe hoger de densiteit, hoe kleiner de inspringen en hoe hoger de schijnbare stijfheid. De tijdschaal het beschrijven van dit gedrag is de ontspanning tijd en is verschillend voor elke viskeuze / visco-elastisch materiaal. Met behulp van snelheden in de buurt van de relaxatietijd zal resulteren in lagere krachten, omdat het celmateriaal tijd heeft om af te stappen van het inspringen sonde. Hogere snelheden resulteren in een hogere weerstand van het monster materiaal en de totale interactie is meer elastisch (kracht is in fase met inspringen, niet snelheid). In het algemeen is het het beste om consistente verblijf in deze parameter om dezelfde initiële condities voor elk experiment hebben. Maar het moet niet worden vergeten dat elk materiaal of celtype eigen ontspanning tijd is, omdat zij kunnen sterk verschillen in hun samenstelling (grootte van de kern, de samenstelling van het cytoskelet, enz.).

Figuur 3. Force afstand curve genomen op een levende CHO-cel (scansnelheid 5 micrometer / s). Trace (rood) en nalopen (donker rood) curve duidelijk hysteresis als gevolg van de viskeuze en het plastisch gedrag van de cel.

Inhomogeniteit van het monster ook kan leiden tot artefacten, zoals variatie van de Young's modulus afhankelijk van de diepte inspringen, dat wil zeggen, afhankelijk van de laag of component van de indenter is eigenlijk te drukken inch Cellen hebben verschillende componenten (zoals glycocalix, membraan extensies, nucleus, of organellen) dat kan weerspiegelen verschillende stijfheid. Het meldpunt is ook te lijden van deze variaties en interacties van de sonde en het monster oppervlak of moleculen die over het oppervlak. Dergelijke curves vertonen vaak een zeer ondiep contactpunt waar E is berekend op zachter dan het monster in werkelijkheid is. De "echte" stijfheid van het monster dus alleen gemeten waarbij de sonde bereikt het juiste oppervlak dat na het ondiepe deel van de curve. Dan is de pasvorm niet overeenkomt met het contactpunt van de Force-inspringen-curve (figuur 4). Maar dit is niet verwonderlijk, want de Hertz model gaat de homogeniteit van het monster en geen interacties tussen monster en sonde. Tot slot is het altijd belangrijk om te focussen op het deel van de curve die de structuur die je wilt onderzoeken vertegenwoordigt.

Figuur 4. Kracht versus indrukking curves afgeleid van een cel, voorzien van de Hertz model. Dezelfde curve eerste was gemonteerd op een inkeping van 200 nm (boven), en ten tweede over de hele inspringen bereik van 400 nm (onder). Uiteraard is de sonde geduwd door twee verschillende lagen sinds het voorzien van contactpunt van de eerste bocht is verschillend van het contactpunt van de tweede curve. De E-module van de eerste bocht, waarin de stijfheid van het celoppervlak, is ongeveer 16 kPa, de een van de tweede curve, dat kan worden aangenomen dat te E-module van het cytoplasma te zijn, ongeveer 35 kPa.

Fit Range

Ook belangrijk is het vinden van de pasvorm bereik dat wordt gebruikt om optimale en reproduceerbare resultaten voor elasticiteit berekeningen opleveren. Zoals beschreven in de voorgaande sectie E sterk fluctueert op een zeer laag inkepingen rondom het contactpunt, maar bereikt een plateau met toenemende inspringen om eindelijk weer toe, voornamelijk als gevolg van de ondergrond stijfheid (glasplaatje etc., zie figuur 5, onderaan). Dus de hoogte van de ingesprongen structuur is sterk te worden overwogen. Het Hertz model is alleen geldig voor kleine inkepingen (laten we zeggen tot 5-10% van de hoogte van de cel, misschien wel 200 tot 500 nm) waar het substraat heeft geen invloed op de berekeningen en waar de geometrie van de inkeping komt overeen met de geometrie van de indenter. Zoals beschreven in de Hertz hierboven, de beste manier om de optimale range te vinden is om een ​​kracht op afstand curve met een relatief hoge inspringen opnemen en naar E geschikt zijn voor elk punt van de overeenkomstige kracht inspringen curve. Het plotten van E over inspringen onthult het inspringen wanneer E begint te neigen naar een constante waarde die moet worden gebruikt om de Young's modulus (figuur 5, midden) te bepalen.

Maar het kan gebeuren dat er geen voor de hand liggende plateau, vooral wanneer inspringen inhomogene monsters. Als een cel bijvoorbeeld is getest recht boven de kern met een relatief klein indringlichaam (bijvoorbeeld een piramide), kan de kern glijden weg van onder de sonde en het resultaat is een afname van de gemeten modulus direct na de kern werd geduwd door de sonde (figuur 5, boven).

Figuur 5. E versus inspringen rondingen van een CHO-cel gemerkt met een piramidale indringlichaam op verschillende regio's: recht boven de kern (boven), het gebied naast de kern (midden) en in de buurt aan de rand van de cel (onder). Het testen van net boven de kern (top) hier slechts tijdelijk aangegeven de stijfheid van de kern. Uiteraard is de kern was dan weg geduwd wat resulteert in afname van E. Probing een relatief homogene regio (midden) toonde zelfs inspringen van het cytoplasma te beginnen bij ongeveer 250 nm. Inspringen van de cel rand (onder) leidt tot een tweede, substraat afhankelijke toename van E beginnen bij relatief lage putjes.

Alle drie de curves van figuur 5 uit dezelfde cel en werden met dezelfde sonde onder precies dezelfde omstandigheden. Ook al is er geen voor de hand liggende "tweede" toename van de E en dus geen voor de hand liggende of typische hint van een effect van de glazen substraat voor zowel boven-E versus inspringen bochten, de toename van de schijnbare stijfheid van de cel centrum naar de rand geeft een invloed van de ondergrond. Maar dit is niet verwonderlijk, want de hoogte van de cel aan de kern werd gemeten op ongeveer 5 micrometer, bij de omgeving van de kern moet worden ongeveer 1,3 micrometer en aan de rand rond 0,5 micrometer. Tot slot van deze resultaten laten zien dat het effect van de ondergrond niet alleen zichtbaar door een toename van E in E versus inspringen lijnen, maar ook door het verhogen van E waarden op dunner regio's van de cellen.

Selectie van de Probe

Welke cantilever moet worden gebruikt hangt af van de stijfheid van het monster. Als vuistregel kan men in gedachten houden dat de stijfheid van de cantilever moet ongeveer het bereik van het monster stijfheid. Voor cellen die zijn erg zacht en delicaat de zachtste uitkragingen leverbaar met veerconstanten van rond de 10 tot 30 mN / m worden gebruikt. Voor stijver monsters, zoals agarose gels hoger veerconstanten (30-100 mN / m of meer) geschikt zijn.

Een ander punt van overweging is de keuze van de indringlichaam vorm. Voor zachte biologische monsters is het aanbevolen om sferische sondes te gebruiken, omdat de kracht wordt toegepast op een ruimere steekproef gebied dan zou het geval zijn als een scherp piramidale of conische tip wordt gebruikt, wat resulteert in een lagere druk worden. Op deze manier penetratie van het monster wordt voorkomen. Maar dit is niet de enige reden om sferische indringlichamen voorkeur. Cellen of weefsels zijn zeer homogene, bestaande uit verschillende componenten (kern, cytoskelet componenten, organellen ...). Te geven een algemene indruk voor een dergelijke homogene materialen relatief grote indringlichamen als 20 urn kralen zijn nuttig.

Naar een hogere resolutie, bijvoorbeeld om enkele cellen of andere cel onderdelen te testen geven, of om de druk om streepje stijvere materialen kralen van kleinere diameters kunnen worden gebruikt (1-10 um, afhankelijk van de gewenste resolutie) te verhogen. Bollen zijn niet altijd de beste oplossing. Als het monster is van zeer kleine afmetingen, of als verschillende gebieden moeten worden getest in een hogere resolutie (hoger dan een micron) piramidale siliciumnitride tips kunnen een alternatief zijn. Een nadeel van een dergelijke meer of minder scherpe punten is natuurlijk dat ze kunnen dus het monster doordringen en leiden tot onjuiste berekeningen van de Young's modulus (over het algemeen een afname van stijfheid).

Maar aan de andere kant zijn ze minder gehinderd door structuren zoals mobiele extensies of residuen zich uitstrekt van de glycocalix dan bollen zijn. Sferische indringlichamen voelen zich vaak deze verlengingen, en het resultaat is een zeer ondiep contactpunt dat is zeer moeilijk te bepalen (dat is ook de reden waarom het zou moeten worden gemonteerd). Een meer algemeen probleem dat zich voordoet met cellen is vervormd kracht bochten, meestal weergegeven als een "schouder" in de regio contact (fig. 6). Deze verstoringen kunnen voortkomen uit contact met kleine structuren zoals stress vezels of membraneuze extensies, die vervolgens slip uit de buurt van de sonde, wat leidt tot een tweede contact punt.

Figuur 6. Vervormd uit te breiden curve genomen op een CHO-cel met behulp van een 2 micrometer bolvormig indringlichaam.

Voorbeeld van een Inspringen Experiment

In dit voorbeeld is de workflow af te leiden van de Young's modulus van levende CHO-cellen is beschreven. De CellHesion ® 200 , gemonteerd op een Zeiss optische microscoop (AxioObserver), werd gebruikt om de sferische sonde die zou worden gebruikt als uit te voeren inspringen experimenten De bereiden CellHesion ® 200 is een nieuw AFM gebaseerd apparaat, speciaal ontwikkeld om te voldoen aan de behoeften van het testen van cellulaire adhesie en mechanica. Een PetriDishHeater ™ werd gebruikt als een monsterhouder aangezien cellen werden gekweekt op WPI petrischaaltjes. De cellen werden gehouden onder fysiologische omstandigheden gedurende het hele experiment (37 ° C, HEPES gebufferd medium).

Voorbereiding van de Probe

Sferische indringlichamen kan worden aangeschaft bij speciale leveranciers zoals deeltje probes uit Novascan (0,6-25 micrometer glazen bollen aan cantilevers), of ze kunnen worden huisgemaakte door lijmen bollen op uitkragingen. Voor een dergelijk doel tipless cantilever zijn zeer geschikt. Zorg moet worden genomen als uitkragingen met tips worden gebruikt, vooral als kleine bolletjes zijn bevestigd. Dit komt omdat de sfeer zal hechten aan de zijkant van de tip, in plaats van op het einde, zodat de tip nog steeds een invloed hebben op het experiment hebben, vooral als de gekozen bol met een diameter kleiner is dan de tip hoogte. Silicium uitkragingen hebben tips tot ongeveer 15 micrometer. Zo tipless uitkragingen zou betere keus of op zijn minst siliciumnitride uitkragingen die korter tips (tot 5 micrometer) hebben worden.

Voor dit voorbeeld een tipless cantilever (Arrow TL1, nanowereld, k = 0,03 N / m) met een aangesloten silica bol (diameter 11 um) werd gebruikt als het inspringen sonde (fig. 7). De silica kralen waren aan de cantilever met een twee-componenten epoxy, maar ook andere biocompatibele lijmen, zoals optische lijm zijn ook goed geschikt. Dit kan eenvoudig worden gedaan door het bereiden van een microscoopglaasje waar bollen worden afgezet op, enerzijds, en epoxy op een aangrenzend deel. Als de kralen worden gesuspendeerd in vloeistof, is een druppel op de glijbaan en gedroogd. Een paar van schone pincet kan ook gebruikt worden om te drogen kralen overbrengen naar de dia, of naar de kraal oplossing te verspreiden. Vervolgens een kleine hoeveelheid van de epoxy is een zeer dun gezaaid in de buurt van de kralen met behulp van een mes of een pipet tip.

Figuur 7. Tipless cantilever met een 11 micron bevestigd sfeer

De cantilever moet eerst worden gedoopt in de epoxy. Een aanpak gebeurt op een schone gebied van glas naar de oppervlakte te vinden. Dan is de cantilever tip is geplaatst over de rand van de epoxy patch met behulp van de positionering schroeven en een kracht spectroscopie meting is uitgevoerd om de tip duik in de lijm. Een setpoint van ongeveer 0,5 tot 1 V zou voldoende moeten zijn. Als er te veel lijm op het puntje kan flow over de hiel en insluiten. Om dit te voorkomen, moeten een of meer aanvullende spectroscopie metingen worden uitgevoerd op een schoon glasoppervlak. Hiermee verwijdert u overtollige lijm. Ten slotte is te bevestigen een bol, is een andere kracht curve lopen met de tip geplaatst over een bol.

Het uitvoeren van Inspringen Experimenten

De microsfeer sonde werd gemonteerd en uitgelijnd zoals gebruikelijk op de AFM hoofd. De WPI petrischaaltje met hechtende CHO-cellen was gemonteerd op de petrischaal verwarming en de temperatuur werd ingesteld op 37 ° C. De cantilever is vervolgens gekalibreerd, dat wil zeggen de veerconstante vastbesloten om te kunnen precies aangeven de kracht te worden toegepast op de steekproef. Met behulp van de NanoWizard ® of CellHesion200 ® de kalibratie manager van de JPK SPM software leidt de gebruiker door de kalibratie proces, de berekening van de gevoeligheid door het aanbrengen van een kracht curve (genomen op een harde ondergrond) in het lineaire gedeelte contact en het bepalen van de veerconstante met de thermische ruis methode. Nadat de kalibratie is voltooid, kan de gewenste setpoint kracht worden ingevoerd in Newton (meestal pico-of nano-Newton). Nu het experiment zou kunnen worden gestart.

Force afstand bochten werden genomen direct boven de kern van verschillende cellen. Relatief hoge setpoints werden gebruikt (tot 4 nN), aangezien de mechanische eigenschappen van deze cellen waren onbekend. De uitbreiding / intrekken snelheid was ingesteld op 5 micrometer / s en gesloten lus werd gebruikt.

Data Processing

De JPK IP-software geeft de mogelijkheid af te leiden van de Young's modulus van kracht bochten doorlopen van verschillende stappen (fig. 8). Alle handelingen moeten worden toegepast op de uit te breiden curve, omdat het (normaal of in ieder geval in vloeistof) bevat geen interacties zoals hechting, dat een bepaling van het contactpunt onmogelijk te maken. De eerste stap van de verwerking is op een offset verwijderen of kantelen van de curve en het contactpunt te vinden. Daarom zijn de opties 'Aftrekken baseline' en 'Zoek contact point' moeten worden geselecteerd. Het is niet noodzakelijk om precies het contactpunt of baseline hier te compenseren, omdat zij zijn variabel fit parameters en hebben geen enkele invloed op de pasvorm resultaten te bepalen. Elke tilt moet worden verwijderd uit de basislijn, omdat dit is geen onderdeel van de Hertz te passen. De volgende stap is het 'juiste hoogte voor cantilever buigen', een functie die de diepte inspringen berekent door het verschil te nemen tussen de piëzo-beweging en de cantilever vertikale afbuiging in eenheden van lengte. Nu is de curves een klaar om te worden uitgerust met de Hertz model af te leiden van de Young's modulus. Andere waarden, zoals het voorzien van 'aanspreekpunt' en de pasvorm kwaliteitsparameter "residuele RMS" worden ook weergegeven.

Figuur 8. Operations af te leiden van de Young's modulus van een kracht curve. De eerste stap is om een ​​offset te verwijderen of kantelen van de basislijn en om het contact punt te vinden. Met het oog op het contactpunt bepalen het optimaliseren van de curve kan worden gladgestreken. De volgende en cruciale stap is om af te trekken van de cantilever buigen van de piëzo-beweging om de inspringing rendement, dat wil zeggen een nieuw kanaal genaamd tip sample scheiding is gemaakt. Tenslotte is de Hertz model kan worden toegepast. De geometrie van de indringlichaam is zo goed worden opgegeven als verhouding tussen Poisson's (dat kan worden ingeleverd bij 0,5 voor biologische monsters) en de data range te worden gemonteerd.

Als er veel bochten zijn opgenomen is er de mogelijkheid om batch verwerking waar alle beschreven handelingen kunnen worden toegepast op een partij van bochten (binnen een map) te gebruiken.

Voor batch-verwerking, is het nuttig om een ​​paar bochten meer in detail te onderzoeken om de optimale pasvorm bereik dat vervolgens kan worden toegepast op alle rondingen te zoeken. Daarom is de fit gamma moet stapsgewijs worden verhoogd tot de E-modulus neigt naar een constante waarde. In figuur 9 van de Young's modulus afgeleid van een CHO-cel wordt uitgezet in afhankelijkheid van inspringen. Hier E begint constante waarden te nemen rond de 700 tot 800 nm van inspringing diepte. Als de behandeling van een reeks van bochten, met behulp van batch-verwerking, moet deze waarde worden gebruikt voor fit bereik. Natuurlijk is de kwaliteit van de fit moet altijd worden gecontroleerd door een van beide Kijk niet direct in de bochten of door het vergelijken van de resterende RMS dat ook is opgeschreven in de resultaten bestand dat wordt gegenereerd bij het gebruik van batch-verwerking.

Figuur 9. E versus inspringen curve van een CHO-cel. Op ongeveer 700 nm inspringen E niveaus om een ​​constant bereik (ongeveer 450 Pa).

Het systeem testen

De Young's modulus wordt vaak gebruikt om de mechanische eigenschappen van cellen en andere monsters te beschrijven. In veel gevallen is de intentie om dergelijke experimenten te doen is om de resultaten te vergelijken met andere gegevens, die door andere onderzoekers. Kammen via de literatuur een vindt altijd verschillen tussen de E-waarden van vergelijkbare experimenten, maar uitgevoerd met behulp van verschillende apparaten. Om te evalueren hoe het systeem werkt, maar ook om een ​​gevoel voor de techniek en de behandeling is het vaak nuttig om te beginnen met een monster waarin de elasticiteit al is beschreven met een soortgelijk systeem te krijgen. Gels van polymeren zoals agarose of polyvinylalcohol zijn welldescribed samples die vaak worden gebruikt om de principes van de elasticiteit van de metingen te beschrijven.

Voor het testen van het systeem waarop de cel experimenten werden uitgevoerd een 2,5% agarosegel was ingesprongen met behulp van een 11 micrometer bolvormig sonde. Sinds agarose gels in deze concentratie zijn stijver dan cellen, stijvere sondes moeten worden gebruikt, bijvoorbeeld met veerconstanten van 0,5-5 N / m. In dit voorbeeld wordt een NSC cantilever van mikromasch (4 N / m) werd gebruikt. De bijbehorende E versus inspringen curve is weergegeven in figuur 10 toont een laatste E van ongeveer 36 kPa. Deze waarde komt goed overeen met de literatuur (figuur 1).

Figuur 10. E versus inspringen curve berekend voor een kracht op afstand bocht genomen op een 2,5% agarosegel met behulp van een 11 micrometer bolvormig sonde met een veerconstante van 4 N / m. De laatste E is ongeveer 36 kPa

Conclusie

Ondanks een aantal beperkingen van de Hertz-model is een handige en veelgebruikte methode om de mechanische eigenschappen van biologische monsters achtige cellen uit te drukken. Er zijn een aantal zaken die moeten in het achterhoofd worden gehouden, zoals het past bereik of de samenstelling van het monster. Biologische monsters vaak visco-elastisch gedrag te vertonen en ze zijn niet homogeen, dat wil zeggen bestaan ​​uit verschillende 'materialen' met verschillende elastische eigenschappen. Om precies te weten welk onderdeel precies wordt beschreven door de resultaten is het zeer belangrijk om kennis te maken met het monster en adequaat aan te passen van de parameters.

Rekening houdend met al deze zaken zal helpen om redelijke en reproduceerbare resultaten opleveren.

De JPK NanoWizard ® II of de CellHesion ® 200 , in combinatie met specifieke sample houders, zoals de PetriDishHeater ™ of de BioCell ™ , bieden de middelen om de elasticiteit van gegevens (onder tal van andere data types) voor biologische monsters te verkrijgen. Daarnaast is de JPK IP-software helpt de gebruiker door alle stappen om de verworven curves voor te bereiden op de verwerking van Hertz en biedt een eenvoudig te calculator gebruiken voor de Young's modulus.

Bron: JPK Instrumenten

Voor meer informatie over deze bron kunt u terecht op JPK Instruments